對(duì)于陽性對(duì)照品和陰性對(duì)照品您了解多少?
陽性對(duì)照品和陰性對(duì)照品是檢驗(yàn)試驗(yàn)有效性的控制品,同時(shí)也作為判斷結(jié)果的對(duì)照,因此對(duì)照品,特別是陽性對(duì)照品的基本組成應(yīng)盡量與檢測標(biāo)本的組成相一致。以人血清為標(biāo)本的測定,對(duì)照品最好也為人血清,因?yàn)檎H搜逶诟鞣Nelisa模式中可產(chǎn)生不同程度的本底。由于大量正常人血甭較難得到,國外試劑盒中的對(duì)照品多以復(fù)鈣人血漿為原料,即在血漿中加入鈣離子,使其中的纖維蛋白質(zhì)凝固,除去凝塊后所得的液體,其組成與血清相似。陰性對(duì)照品須先行檢測,確定其中不含待測物質(zhì)。例如hbsag檢測的陰性對(duì)照品中不可含hbsag,最好抗hbs也是陰性。陽性對(duì)照品多以含蛋白保護(hù)劑的緩沖液為基質(zhì),其中加入一定量的待檢物質(zhì),此量最好在試劑說明書中標(biāo)明。加入的量應(yīng)與試劑的敏感度相稱,在測定中得到的吸光值與受檢標(biāo)本吸光值比較,可對(duì)標(biāo)本中受檢物質(zhì)的量有一個(gè)粗略的估計(jì)。國外檢測hbsag的elisa試劑盒檢測敏感度約為0.5ng/ml,陽性對(duì)照品中含量約為10ng/ml。在對(duì)照品中一般加入抗生素和防腐劑,以利保存。
包被用抗體
包被固相載體的抗體應(yīng)具有高親和力和高特異性,可取材于抗血清或含單克隆抗體的腹水或培養(yǎng)液。如免疫用抗原中含有雜質(zhì)(即便是極微量的),在抗血清中將出現(xiàn)雜抗體,必須除去(可用吸收法)后才能用于elisa,以保證試驗(yàn)的特異性??寡宀荒苤苯佑糜诎?,應(yīng)先提取igg,通常采用硫酸銨鹽析和sephadex凝膠過濾法。一般經(jīng)硫酸銨鹽析粗提的igg已可用于包被,高度純化的igg性質(zhì)不穩(wěn)定。如需用高親和力的抗體包被以提高試驗(yàn)的敏感性,則可采用親和層析法以除去抗血清中含量較多的非特異性igg。腹水中單抗的濃度較高,特異性亦較強(qiáng),因此不需要作吸收和親和層析處理,一般可將腹水作適當(dāng)稀釋后直接包被,必要時(shí)也可用純化的igg。應(yīng)用單抗包被時(shí)應(yīng)注意,一種單抗僅針對(duì)一種抗原決定簇,在某些情況下,用多種單抗混合包被,可取得更好的效果。
包被的條件
包被用抗原或抗體的濃度,包被的溫度和時(shí)間,包被液的ph等應(yīng)根據(jù)試驗(yàn)的特點(diǎn)和材料的性質(zhì)而選定??贵w和蛋白質(zhì)抗原一般采用ph9.6的碳酸鹽緩沖液作為稀釋液,也有用ph7.2的磷酸鹽緩沖液及ph7~8的tris-hcl緩沖液作為稀釋液的。通常在elisa板孔中加入包被液后,在4-8℃冰箱中放置過夜,37℃中保溫2小時(shí)被認(rèn)為具有同等的包被效果。包被的適當(dāng)濃度隨載體和包被物的性質(zhì)可有很大的變化,每批材料需通過實(shí)驗(yàn)與酶結(jié)合物的濃度協(xié)調(diào)選定。一般蛋白質(zhì)的包被濃度為100ng/ml-20ug/ml。
包被的方式
將抗原或抗體固定在過程稱為包被。換言之,包被即是抗原或抗體結(jié)合到固相載體表面的過程。蛋白質(zhì)與聚苯乙x固相載體是通過物理吸附結(jié)合的,靠的是蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)上的疏水基團(tuán)與固相載體表面的疏水基團(tuán)間的作用于。這種物理吸附是非特異性的,受蛋白質(zhì)的分子量、等電點(diǎn)、濃度等的影響。載體對(duì)不同蛋白質(zhì)的吸附能力是不相同的,大分子蛋白質(zhì)較小分子蛋白質(zhì)通常含有更多的疏水基團(tuán),故更易吸附到固相載體表面。igg對(duì)聚苯乙x等固相具有較強(qiáng)的吸附力,其聯(lián)結(jié)多發(fā)生在fc段上,抗體結(jié)合點(diǎn)暴露于外,因此抗體的包被一般均采用直接吸附法。蛋白質(zhì)抗原大多也可采用與抗體相似的方法包被。當(dāng)抗原決定簇存在于或鄰近于疏水區(qū)域時(shí),抗原與固相載體的直接吸附可使抗原決定簇不能充分暴露,在這種情況下,直接包被效果不佳,可以采用間接的捕獲包被法,即先將針對(duì)該抗原的特異抗體作預(yù)包被,其后通過抗原抗體反應(yīng)使抗原固相化。此間接結(jié)合在固相上的抗原遠(yuǎn)離載體表面,其抗原決定簇也得以充分暴露。間接包被的抗原經(jīng)固相抗體的親和層析作用,包被在固相上的抗原純度大大提高,因此含雜質(zhì)較多的抗原也可采用捕獲包被法,試驗(yàn)的特異性、敏感性均由此得以改善,重復(fù)性亦佳。間接包被的另一優(yōu)點(diǎn)是抗原用量少,僅為直接包被的1/10乃至于/100。不易吸附在聚苯乙x載體上的非蛋白質(zhì)抗原可采用特殊的包被方式。例如,在檢測抗dna抗體時(shí),需用dna作為包被抗原,而普遍的固相載體一般不能直接與核酸結(jié)合??蓪⒕郾揭襵先經(jīng)紫外線照射,以增加其吸附性能。固相載體先用堿性蛋白質(zhì),如聚賴氨酸、魚精蛋白等作預(yù)包被,也可提高核酸的結(jié)合力。也可用親和素生物素系統(tǒng)作間接包被,即用親和素先包被載體,然后加入生物素化的dna,這種包被方法均勻、牢固,已擴(kuò)大應(yīng)用于各種抗原物質(zhì)的定量測定。
脂類物質(zhì)無法與固相載體結(jié)合,可將其在有機(jī)溶劑中溶解后加入elisa板孔中,開蓋置冰箱過夜或冷風(fēng)吹干,待酒精揮發(fā)后,讓脂質(zhì)自然干固在固相表面。抗心磷脂抗體的elisa試劑一般采用這種包被方式。
洗板方法:
1.手工洗板方法:吸去或甩掉酶標(biāo)板內(nèi)的液體;在實(shí)驗(yàn)臺(tái)上鋪墊幾層吸水紙,酶標(biāo)板朝下用力拍幾次;將推薦的洗滌緩沖液至少0.3ml注入孔內(nèi),浸泡1-2分鐘,根據(jù)需要,重復(fù)此過程數(shù)次。
2.自動(dòng)洗板:如果有自動(dòng)洗板機(jī),應(yīng)在熟練使用后再用到正式實(shí)驗(yàn)過程中。待檢樣本:體液、血清、血漿、細(xì)胞培養(yǎng)上清液、尿液、組織勻漿、心房水標(biāo)本等。
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