漲知識(shí) | 克隆專題一:不同分子克隆方法介紹(上)
克隆是英文“clone”或“cloning”的音譯,而英文“clone”則起源于希臘文“klone”,原意是指以幼苗或嫩枝插條。1963年j.b.s.haldane在題為“人類種族在未來(lái)二萬(wàn)年的生物可能性”的演講上采用“克?。╟lone)”的術(shù)語(yǔ),把“克隆技術(shù)”帶到了人們的視野中。
克隆技術(shù)又稱為“生物放大技術(shù)”,目前應(yīng)用泛的技術(shù)為“分子克隆”,又稱重組dna技術(shù),即通過(guò)重組技術(shù)將目的dna片段按照人們的設(shè)計(jì)定向連接起來(lái),在特定的受體細(xì)胞中與載體同時(shí)復(fù)制并得到表達(dá),產(chǎn)生新的遺傳性狀的技術(shù)。
隨著分子生物學(xué)研究的不斷深入,分子克隆技術(shù)也隨之更新迭代,從傳統(tǒng)的依賴限制性內(nèi)切酶的方法發(fā)展到如今的ta克隆、topo克隆、無(wú)縫克隆、gateway技術(shù)等等,新的技術(shù)不斷涌現(xiàn),為分子生物學(xué)的發(fā)展和進(jìn)化提供新的力量。今天小翌就帶領(lǐng)大家認(rèn)識(shí)一下不同的分子克隆方法。
01傳統(tǒng)分子克隆技術(shù)傳統(tǒng)分子克隆技術(shù)的依賴于限制性內(nèi)切酶和酶切位點(diǎn)。主要步驟是通過(guò)限制性內(nèi)切酶(翌圣的funicut™快速限制性內(nèi)切酶cat#15001es-15051es)酶切載體和目的基因,通過(guò)連接酶(翌圣t4 dna連接酶cat#10300)將酶切的片段拼接在一起(即連接過(guò)程),形成可以表達(dá)目的基因的新載體(即重組質(zhì)粒),使用轉(zhuǎn)化技術(shù)轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞中,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)目的基因的擴(kuò)增、轉(zhuǎn)錄和翻譯。
傳統(tǒng)分子克隆實(shí)驗(yàn)流程如下圖:
圖1.傳統(tǒng)分子克隆實(shí)驗(yàn)流程
該技術(shù)最早由cohen group在1973年實(shí)現(xiàn),他們將e.coli的tetr質(zhì)粒psclol和nersrr6-3質(zhì)粒體外限制酶切割,連接成新的質(zhì)粒,轉(zhuǎn)化e.coli,在含四環(huán)素和新霉素的平板上篩選出了terrner,實(shí)現(xiàn)了細(xì)菌遺傳性狀的轉(zhuǎn)移。傳統(tǒng)分子克隆技術(shù)較為成熟,但是該方法受到限制性酶切位點(diǎn)和連接效率等方面的限制,并不能高效、準(zhǔn)確的克隆需要的目的基因。
圖2.stanley cohen和herbert boyer(第一個(gè)成功實(shí)現(xiàn)基因工程技術(shù)的團(tuán)隊(duì))
02ta克隆ta克?。╫riginal ta cloning kit),依賴于pcr反應(yīng)中所使用的聚合酶具有末端轉(zhuǎn)移的活性,通常在克隆片段的3’末端加上a尾(即3’-a),通過(guò)連接酶(翌圣t4 dna連接酶cat#10300)把克隆片段與一個(gè)具有3’-t突出的載體dna連接起來(lái)。主要應(yīng)用于不清楚目的基因dna序列的實(shí)驗(yàn),通過(guò)ta克隆重組到t-載體后,使用t-載體的上下游引物擴(kuò)增片段,測(cè)序,最終確定目的基因序列。其中,聚合酶的選擇尤為重要,翌圣普通pcr試劑盒(cat#10102/10103/10157)、翌圣快速pcr試劑盒(cat#10157)均具有taq dna聚合酶,擴(kuò)增后的pcr產(chǎn)物具有3’-da突出端,可輕松克隆至t載體。
圖3. ta克隆流程示意圖【3】
03topo克隆topo克隆技術(shù)是通過(guò)topo載體上偶聯(lián)的異構(gòu)酶(topoisomerase)實(shí)現(xiàn)插入片段的快速克隆。其原理是利用topo載體兩端通過(guò)磷酸鍵偶聯(lián)的topo酶,在連接反應(yīng)中,受插入片段的5'端羥基的攻擊,磷酸鍵釋放能量。利用該能量,插入片段5'端羥基與載體片段3'端磷酸基團(tuán)連接在一起,topo異構(gòu)酶從載體分子上脫落,完成連接反應(yīng)。不同于傳統(tǒng)的ta克隆,topo克隆能夠在2-5 min內(nèi)快速完成插入片段和載體的連接反應(yīng),操作簡(jiǎn)單,連接效率。
圖4. topo克隆原理
目前市面上的產(chǎn)品,需根據(jù)dna片段末端的不同,選擇不同的topo克隆試劑盒。而翌圣新品零背景通用型topo克隆試劑盒(cat#10906),能夠兼容平末端產(chǎn)物或粘性末端產(chǎn)物,不受片段末端影響,快速克隆連接,效率高,陽(yáng)性率接近100%,如圖5所示。
圖5.topo ta/blunt克隆試劑盒輕松連接2 kb(10 ng)平末端/粘性末端片段注:a&b:topo克隆轉(zhuǎn)化平板。c&d:插入片段pcr鑒定電泳圖。
04無(wú)縫克隆技術(shù)傳統(tǒng)克隆和ta克隆兩種方法費(fèi)時(shí)費(fèi)力,過(guò)程繁冗,為了解決限制性酶切位點(diǎn)的限制,科學(xué)家們研發(fā)出新的、快速、簡(jiǎn)潔、高效的克隆技術(shù)——無(wú)縫克隆,區(qū)別于傳統(tǒng)分子克隆,的差異在于載體末端和引物末端應(yīng)具有15-20個(gè)同源堿基,由此得到的pcr產(chǎn)物兩端便分別帶上15-20個(gè)與載體序列同源性的堿基,依靠堿基間作用力互補(bǔ)配對(duì)成環(huán),不經(jīng)過(guò)酶切,pcr產(chǎn)物和線性化載體在同源重組酶的作用下,經(jīng)過(guò)一定的時(shí)間和溫度即可進(jìn)行轉(zhuǎn)化,完成定向克隆。
圖6.同源重組原理
無(wú)縫克隆技術(shù)最早是2009年由daniel gibson和j. craig venter發(fā)展起來(lái),廣泛應(yīng)用的方法包括兩種gibson assembly和in-fusion cloning,原理都是通過(guò)外切酶產(chǎn)生黏性末端,再通過(guò)同源重組酶的連接得到重組片段,但是兩種方法的外切酶不同,形成重組序列的方式也不一樣。gibson assembly:包含t5 exonuclease、phusion dna polymerase和taq dna ligase三種酶,通過(guò)5’→3’ t5核酸外切酶活性,沿著5’→3’方向降解dsdna,產(chǎn)生3’黏性末端,通過(guò)同源臂互補(bǔ)配對(duì),退火后借助phusion dna聚合酶修復(fù)片段上的缺口,taq dna連接酶催化片段形成磷酸二酯鍵,將所有缺口補(bǔ)齊,獲得重組片段。
圖7. gibson assembly原理圖【5】
in-fusion cloning:具有3’→5’ 核酸外切酶,能夠識(shí)別3’末端堿基,沿著3’→5’ 方向降解dsdna,產(chǎn)生5’黏性末端,同源臂互補(bǔ),退火后配對(duì),因?yàn)槠洳缓B接酶,所以要將重組片段轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞內(nèi),序列中的缺口會(huì)在感受態(tài)體內(nèi)補(bǔ)平、連接,獲得重組片段。
圖8. in-fusion cloning原理【6】
翌圣同源重組試劑盒利用無(wú)縫克隆技術(shù),僅需50℃反應(yīng)20 min即可轉(zhuǎn)化,完成定向克隆,克隆陽(yáng)性率可達(dá)95%以上。其中,翌圣一步法快速克隆試劑盒(cat#10911es)可連接單片段,該試劑盒已發(fā)文章累計(jì)if達(dá)到1000+。翌圣通用型一步法快速克隆試劑盒(cat#10922es)可連接1-6片段,最長(zhǎng)連接片段可達(dá)23 kb,是多片段連接的。通過(guò)上述的介紹,相信大家已經(jīng)初步了解了目前實(shí)驗(yàn)室中常用的分子克隆技術(shù),那么還有哪些新開(kāi)發(fā)的分子克隆技術(shù)呢?無(wú)縫克隆中不常見(jiàn)、特殊的分子克隆技術(shù)又有哪些呢?關(guān)注我們,小翌會(huì)在下一期的分子克隆技術(shù)專題中,給大家介紹新的分子克隆技術(shù),為您的實(shí)驗(yàn)帶來(lái)新的思路與方向,期待下一次的見(jiàn)面~
05相關(guān)產(chǎn)品列表
產(chǎn)品定位
產(chǎn)品名稱
產(chǎn)品貨號(hào)
規(guī)格
通用緩沖液,5min完成精準(zhǔn)酶切
funicut™快速限制性內(nèi)切酶
15001es-15051es
50 t
常規(guī)pcr
2×hieff®pcr master mix(with dye)
10102es03/08
1 ml/5×1 ml
常規(guī)pcr,不含染料
2×hieff®pcr master mix(no dye)
10103es03/08
1 ml/5×1 ml
快速pcr,快至1s/kb
2×hieff®ultra-rapid hotstart pcr master mix(with dye)
10157es03/08
1 ml/5×1 ml
topo克隆-兼容ta/平末端
hieff clone®universal zero topo ta/blunt cloning kit
10906es20
20 t
topo克隆-ta末端
hieff clone®zero topo-ta cloning kit 零背景topo-ta克隆試劑盒
10907es20
20 t
topo克隆-平末端
hieff clone®zero topo-blunt cloning kit
10909es20
20 t
單片段一步克隆,已發(fā)文章累計(jì)if達(dá)到1000+
hieff clone®plus one step cloning kit一步法快速克隆試劑盒
10911es20/50
20 t/50 t
1-6片段一步克隆,最快5分鐘完成重組反應(yīng)
hieff clone®universal one step cloning kit通用型一步法快速克隆試劑盒
10922es20/50
20 t/50 t
參考文獻(xiàn)
1.barany f.genetic disease detection and dna amplification using cloned thermostable ligase[j].proc natl acad sci usa,1991,88(1),189-193.2.holton ta,graham mw.a simple and efficient method for direct cloning of pcr products using ddt-tailed vectors[j].nucleic acidsres,1991,19(5),1156.3.clark d p,pazdernik n j,mcgehee m r.cloning genes for synthetic biology-sciencedirect[j].molecular biology(third edition),2019:199-239.4.seki t,seki m,onoderar,et al.cloning of cdna encoding a novel mouse dna topoisomerase iii(topo iiibeta)possessing negatively supercoiled dna relaxing activity,whose message is highly expressed in the testis[j].j biol chem,1998,273(44):28553-28556.5.gibson dg,young l,chuangry,et al.enzymatic assembly of dna molecules up to several hundred kilobases[j].nat methods,2009,6(5):343-345.6.張陽(yáng)璞,楊淑慎.幾種新型植物基因表達(dá)載體的構(gòu)建方法[j].生物工程學(xué)報(bào),2015,31(03):311-327.